Microscopie par excitation UV de surface

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La microscopie par excitation UV de surface (Microscopy UV Surface Excitation) est une méthode d’imagerie médicale qui utilise la faible pénétration des photons ultraviolets (230-300 nm) dans la matière, principalement biologique[1],[2],[3],[4]. Tandis que les techniques d’imagerie classiques nécessitent le plus souvent de réaliser de minces lames d’échantillon afin d’exclure le signal provenant d’autres plans que le plan focal, la faible pénétration des UV réduit la zone excitée à une fine couche et permet d’éviter la réalisation de minces couches de tissus. La totalité du signal collecté provient de la zone désirée et tous les photons détectés permettent de reconstituer l’image.

Mécanisme[modifier | modifier le code]

Le système est basé sur le modèle d’un microscope inversé[2],[3],[4]. Une platine automatisée est utilisée pour imager de plus grandes zones en réalisant une mosaïque d’images adjacentes. La lumière UV provenant de la diode électroluminescente (DEL) est focalisée à l’aide d’une lentille sphérique de courte longueur focale sur la surface de l’échantillon. La lumière incidente est inclinée par rapport à la surface de l’échantillon. Il est par ailleurs nécessaire de placer l’illumination UV du même côté que la caméra car les optiques standards transmettent mal cette partie du spectre électromagnétique. Il n’est en revanche pas nécessaire d’utiliser de miroir dichroïque ou de filtre car les objectifs de microscope sont opaques à la lumière UV. La fluorescence émise est collectée en utilisant un objectif à longue distance de travail et focalisée sur une caméra CCD grâce à une lentille tubulaire.

Les spécimens sont immergés dans un marqueur exogène pendant 10 s et rapidement rincés à l’eau ou au PBS (Phosphate Buffered Saline)[2]. Les échantillons ainsi teints génèrent un signal suffisamment fort pour une interprétation directe via l’oculaire du microscope.

Amélioration du contraste[modifier | modifier le code]

Les travaux précédents sur MUSE incluent la détection de molécules fluorescentes dans des tissus humains intacts pour la caractérisation fonctionnelle et structurelle, limitée par la faible auto-fluorescence des tissus. L’utilisation de marqueurs fluorescents exogènes peut permettre d’augmenter le signal provenant des échantillons.

Plusieurs marqueurs ont été étudiés comme l'éosine, la rhodamine, le DAPI, Hoechst, l'acridine orange, l'iodure de propidium et la proflavine[2]. L' éosine et la rhodamine marquent le cytoplasme et la matrice extracellulaire, rendant le corps du tissu visible. Hoechst et DAPI fluorescent fortement lorsqu'ils sont liés à l'ADN, ce qui en fait d'excellent marqueurs de noyaux.

Innovation et portée de l’invention[modifier | modifier le code]

Les diagnostics basés sur l’observation par microscopie sont largement répandus et utilisés comme étalon-or dans les analyses histologiques. Cependant cette procédure est assez lourde car elle nécessite de nombreuses étapes très chronophages telles que la fixation, l’enrobage dans de la paraffine, le découpage en lames minces et l’encrage des échantillons afin de produire des lames de microscope optiquement translucides (4-6 μm d’épaisseur). Bien que cette technique soit largement utilisée dans les régions développées, il devient plus difficile d’y accéder dans des régions aux ressources limitées et la nécessité d’avoir une technologie moins onéreuse et plus efficace se fait d’autant plus sentir[5],[6]. La portée principale du système MUSE est de permettre de produire rapidement une image haute résolution contenant des informations subcellulaires, en un temps moindre et en requérant moins de personnel qualifié. À l’aide de l’excitation UV à 280nm et un appareil simple mais robuste, le système MUSE collecte le signal en fluorescence sans nécessiter de traitement d’image complexe ou de filtrage en fluorescence[1]. Il peut potentiellement générer des images de haute qualité contenant davantage d’informations que les lames de microscope classiques. Les images fournies par MUSE ont été validées avec des valeurs de diagnostic[2],[3]. Le système est capable de produire des images provenant de différents types de tissus, qu’ils soient frais ou fixés.

Utilisation[modifier | modifier le code]

Le système MUSE sert principalement d’alternative peu coûteuse à la traditionnelle analyse histologique utilisée pour le diagnostic de cancer, à l’aide de techniques plus simples et moins chronophages[1],[2],[3],[4]. En rassemblant la microscopie et le marquage des échantillons dans un système optique automatisé, le temps nécessaire à l’acquisition d’images et l’obtention d’un diagnostic est réduit à quelques dizaines de minutes, à comparer avec les procédures de pathologie standard qui peuvent prendre de quelques heures à plusieurs jours. Les techniques de cartographie des couleurs, qui établissent la corrélation entre la fluorescence et les techniques classiques de marquage H&E, permettent aux pathologistes d’avoir la même représentation visuelle des échantillons qu’avec les techniques standard, sans qu’il soit nécessaire de procéder à une nouvelle acquisition.

Avantages et désavantages[modifier | modifier le code]

Avantages Inconvénients
Peu onéreux Fonctionne uniquement Ex vivo
Comparaison avec les techniques standard d’analyse possible grâce à la cartographie colorimétrique. Faible profondeur de pénétration
Efficacité temporelle
Non nécessité de faire des lames de tissus translucides
Non destructif et compatible avec les tests moléculaires downstream.

Références[modifier | modifier le code]

  1. ↑ a b et c Farzad Fereidouni, Ananya Datta Mitra, Stavros Demos, Richard Levenson, Microscopy with UV Surface Excitation (MUSE) for slide-free histology and pathology imaging, Proc. SPIE 9318, Optical Biopsy XIII: Toward Real-Time Spectroscopic Imaging and Diagnosis, 93180F (11 mars 2015).
  2. ↑ a b c d e et f F. Fereidouni, Z. T. Harmany, M. Tian, A. Todd, J. A. Kintner, J. D. Mcpherson, E. Levenson, Microscopy with ultraviolet surface excitation for rapid slide-free histology. Nature Biomedical Engineering, 2017. doi:10.1038/s41551-017-0165-y.
  3. ↑ a b c et d Richard M. Levenson, Zachary Harmany, Stavros G. Demos, Farzad Fereidouni, Slide-free histology via MUSE: UV surface excitation microscopy for imaging unsectioned tissue (Conference Presentation), Proc. SPIE 9703, Optical Biopsy XIV: Toward Real-Time Spectroscopic Imaging and Diagnosis, 97030J (26 avril 2016); doi: 10.1117/12.2219407
  4. ↑ a b et c R. Levenson, F. Fereidouni, Z. Harmany, M. Tan, M. Lechpammer, S. Demos, Slide-Free Microscopy via UV Surface Excitation. Microscopy and Microanalysis, 22(S3), 2016, p. 1002-1003. doi:10.1017/s1431927616005857
  5. ↑ O. A. Adeyi, Pathology services in developing countries—the West African experience, Arch. Pathol. Lab. Med. 135, 183–186 (2011)
  6. ↑ H. Benediktsson, J. Whitelaw, I. Roy, Pathology services in developing countries: a challenge, Arch. Pathol. Lab. Med. 131, 1636–1639 (2007)
v · m
Microscopes optiques
Microscopes électroniques
Microscopes à sonde locale
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