« Agglutinine I du ricin commun » : différence entre les versions
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Version du 11 janvier 2024 à 17:03
Agglutinine I du ricin commun | ||
Caractéristiques générales | ||
---|---|---|
Synonymes | RCA, RCA I, RCA 120 | |
Fonction | toxine végétale | |
Distribution | albumen de la graine | |
Ricinus communis | ||
Masse moléculaire | ~120 000 Da[1] | |
RefSeq (protéine) | AAB22584.1 | |
L'agglutinine I du ricin commun ou agglutinine I de Ricinus communis (en anglais, Ricinus communis agglutinin I, acronyme RCA I[a]) est une protéine du groupe des lectines trouvée naturellement aux côtés de la toxine ricine dans les graines du ricin commun, une plante de la famille des Euphorbiaceae[2]. Elle est appelée ainsi par opposition à la ricine, qui est parfois désignée comme « agglutinine II de Ricinus communis »[3].
Biochimie
En termes de structure, c'est un tétramère glycoprotéique de 120 kDa[b] composé de deux dimères semblables à la ricine[4], chacun pouvant être dissocié par réduction disulfure en sous-unités d'environ 27 et 33 kDa ; une sous-unité partage une grande identité avec la chaîne B de la ricine (RTB), tandis que l'autre est unique à la RCA[5],[6].
Toxicité
La RCA n'induit qu'environ 3 % de la toxicité de la ricine dans les essais de cytotoxicité sur des cellules humaines, mais c'est une agglutinine — plus précisément une hémagglutinine comme la concanavaline A — capable d'induire l'hémagglutination des érythrocytes (globules rouges)[7],[5]. Cette activité peut expliquer certains des derniers symptômes de l'empoisonnement à la ricine brute non purifiée, notamment l'hémorragie. La RCA est faiblement absorbée par le tube digestif chez les animaux et n'est pratiquement pas toxique pour les souris par rapport à la ricine[8]. Bien que la ricine soit considérablement plus toxique que la RCA, une préparation brute contenant à la fois de la ricine et de la RCA semble être plus toxique que la ricine seule, indiquant un effet synergique des deux substances dans la toxicité[9].
Expression génétique
Les séquences primaires complètes des protéines de la ricine et de la RCA ont été déterminées[10],[11], puis déduites de la séquence nucléotidique des ADNc clonés et des clones génomiques[4],[12],[13]. Les gènes de la ricine et de la RCA codent tous deux pour une protéine précurseur contenant une séquence signal N-terminale, une chaîne A, une région de liaison de 12 acides aminés et une chaîne B[4],[12],[14]. Les chaînes A de la ricine (31 kD) et de la RCA diffèrent par 18 de leurs 267 résidus, avec 93 % d'identité au niveau des acides aminés, tandis que les chaînes B (pour la ricine, 31,5 kD) diffèrent par 41 de leurs 262 résidus, avec 84 % d'identité[4]. Auparavant, on pensait que la ricine et la RCA étaient codés par une famille multigénique composée d'environ huit membres[13],[14], dont au moins trois étaient non fonctionnels[14]. Cependant, le séquençage du génome du ricin a démontré la présence de 28 copies de gènes et pseudogènes liés à la ricine[15]. L'expression des gènes de la ricine et de la RCA est spécifique à chaque tissu et régulée par le développement, de sorte que la ricine et la RCA matures ne s'accumulent que dans l'albumen des graines de ricin[16],[14],[17]. Les fonctions biologiques de la ricine et de la RCA dans la plante restent inconnues, on pense qu'elles pourraient avoir un rôle de défense contre les prédateurs[18].
Notes et références
Notes
- Les auteurs scientifiques utilisent aussi l'acronyme simplifié « RCA », sans mentionner le numéro, la distinction n'étant souvent pas nécessaire avec la ricine, qui n'est plus considérée comme une vraie agglutinine.
- D'où un autre acronyme utilisé pour le désigner : RCA120.
Références
- Les valeurs de la masse et du nombre de résidus indiquées ici sont celles du précurseur protéique issu de la traduction du gène, avant modifications post-traductionnelles, et peuvent différer significativement des valeurs correspondantes pour la protéine fonctionnelle.
- Stirpe et Lappi 2014.
- Garth L. Nicolson et John Blaustein, « The interaction of Ricinus communis agglutinin with normal and tumor cell surfaces », Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Biomembranes, vol. 266, no 2, , p. 543–547 (ISSN 0005-2736, DOI 10.1016/0005-2736(72)90109-5, lire en ligne, consulté le )
- L. M. Roberts, F. I. Lamb, D. J. Pappin et J. M. Lord, « The primary sequence of Ricinus communis agglutinin. Comparison with ricin », The Journal of Biological Chemistry, vol. 260, no 29, , p. 15682–15686 (ISSN 0021-9258, PMID 2999130, lire en ligne, consulté le )
- (en) Ramesh Hegde et Sunil K. Podder, « Studies on the variants of the protein toxins ricin and abrin », European Journal of Biochemistry, vol. 204, no 1, , p. 155–164 (ISSN 0014-2956 et 1432-1033, DOI 10.1111/j.1432-1033.1992.tb16618.x, lire en ligne, consulté le )
- (en) Ramesh Hegde et Sunil K. Podder, « Evolution of tetrameric lectin Ricinus communis agglutinin from two variant groups of ricin toxin dimers », European Journal of Biochemistry, vol. 254, no 3, , p. 596–601 (ISSN 0014-2956 et 1432-1033, DOI 10.1046/j.1432-1327.1998.2540596.x, lire en ligne, consulté le )
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- Stirpe et Lappi 2014, p. 4-5.
Annexes
Bibliographie
- [Stirpe et Lappi 2014] (en) Fiorenzo Stirpe et Douglas A. Lappi, Ribosome-inactivating Proteins : Ricin and Related Proteins, John Wiley & Sons, (ISBN 978-1-118-12565-6, lire en ligne).
- [McKeon 2016] (en) Thomas A. McKeon, « Chapter 4 - Castor (Ricinus communis L.) », dans Thomas A. McKeon, Douglas G. Hayes, David F. Hildebrand et Randall J. Weselake (eds.), Industrial Oil Crops, Academic Press et AOCS Press, (ISBN 978-1-893997-98-1, DOI 10.1016/B978-1-893997-98-1.00004-X , lire en ligne [PDF]), p. 75–112.
- [Kole et Rabinowicz 2018] (en) Chittaranjan Kole et Pablo Rabinowicz, The Castor Bean Genome, Springer Cham, coll. « Compendium of Plant Genomes », (ISBN 978-3-319-97280-0, ISSN 2199-479X, DOI 10.1007/978-3-319-97280-0 , lire en ligne).