Laboratoire sur puce

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Laboratoire microfluidique sur puce. Les aiguilles en acier, de l'épaisseur d'un cheveu, servent ici de point d'accès pour des fluides

Un laboratoire sur puce est un dispositif intégré rassemblant, sur un substrat miniaturisé, une ou plusieurs fonctions de laboratoire.

Historique et définitions[modifier | modifier le code]

L'analyse du vivant regroupe trois des quatre raisons majeures ayant entraîné le développement de la microfluidique ; elle représente par conséquent une large part des applications. On considère généralement que le premier dispositif microfluidique d'analyse est celui développé par Terry et al. ; ceux-ci réalisent en 1979 un système miniaturisé d'analyse de gaz par chromatographie sur un substrat de silicium[1]. Ils réduisent les dimensions du dispositif de trois ordres de grandeur, tout en intégrant une colonne de séparation d'1,5 m de long, capable de séparer des mélanges gazeux hydrocarbonés en moins de dix secondes. Ce travail est tellement novateur qu'il faut attendre dix ans pour voir émerger des travaux analogues et la rationalisation du concept : Manz et al. proposent en 1990 la notion de « systèmes miniaturisés d'analyse chimique totale » (miniaturized total chemical analysis systems), plus tard abrégé en « microTAS » (micro total analysis systems, microsystèmes d'analyse totale)[2]. Ce terme regroupe les systèmes miniaturisés, possédant généralement une dimension micrométrique, qui intègrent la séquence complète d'analyse d'un échantillon brut jusqu'à la lecture du résultat. Le concept de « laboratoire sur puce » (lab-on-a-chip, LOC), plus général, émerge plus tard, quand il s'avère que les technologies de microTAS ont d'autres applications que la chimie analytique. La notion de laboratoire sur puce est moins restrictive que celle de microTAS : un laboratoire sur puce ne contient pas nécessairement l'intégralité de la chaîne d'analyse, alors que c'est la définition d'un microTAS ; les laboratoires sur puce de synthèse chimique ne sont par exemple pas des microTAS[3]. On peut définir un laboratoire sur puce comme un dispositif intégré rassemblant, sur un substrat miniaturisé, une ou plusieurs fonctions de laboratoire.

Débuts[modifier | modifier le code]

Les premiers travaux des années 1990 consistent en la miniaturisation de dispositifs d'analyse chimique. Manz et al. utilisent des techniques de photolithographie, d'oxydation et de gravure chimique pour réaliser des puces d'électrophorèse capillaire sur silicium[4]. L'application de plus fortes tensions électriques, nécessaire pour rendre l'analyse plus rapide et performante, incite rapidement à se tourner vers le verre. Harrison et al. développent ce concept en réalisant, sur une puce en verre, un système intégré d'électrophorèse capillaire, comprenant des pompes électro-osmotiques[5],[6]. Ces travaux novateurs démontrent à l'époque les potentialités des systèmes d'analyse miniaturisés ; de nombreuses équipes de recherche décident alors de développer de tels dispositifs, entraînant de nombreuses avancées technologiques[7].

Développement récent[modifier | modifier le code]

Les travaux sur les laboratoires sur puce et les microTAS trouvent rapidement leur place. Des journaux comme Electrophoresis ou Anal. Chem. les accueillent à bras ouverts. La conférence internationale annuelle microTAS (International conference on miniaturized systems for chemistry and life sciences) existe depuis 1994[8] ; le journal Lab on a Chip, publié par RSC Publishing, est créé en 2001. Les travaux récents dans le domaine des laboratoires sur puce et des microsystèmes d'analyse totale font régulièrement l'objet de revues de la littérature[9],[10],[11].

Applications[modifier | modifier le code]

La chimie analytique et la biologie moléculaire participent fortement au développement de la microfluidique et des laboratoires sur puce ; la majorité des applications relève donc de ces domaines. En 2002, Auroux et al. en proposent une revue assez complète, en particulier concernant les opérations standard d'analyse chimique[12]. Des laboratoires sur puce sont actuellement développés pour l'étude de la plupart des molécules et macromolécules biologiques : ADN[13],[14], protéines et peptides[15],[16], cellules[17],[18], anticorps et antigènes[19],[20] et sucres[21],[22]. Les applications visées en recherche et développement sont le diagnostic clinique (grippe aviaire[23], cancer[24]), notamment en « point de service », et la recherche pharmaceutique[25] : les techniques miniaturisées permettent de réaliser des criblages parallélisés haut débit pour la découverte de médicament. Les techniques de surveillance biomédicale en point de service sont également généralisées à la sécurité sanitaire des aliments et l'analyse chimique environnementale, afin de contrôler la qualité de la nourriture ou la pollution des cours d'eau[26]. Par ailleurs, une part non négligeable des financements de recherche sur les laboratoires sur puce provient des fonds alloués à la lutte contre le bioterrorisme ; on voit par exemple apparaître des dispositifs de détection du gaz sarin dans le sang[27]. Les Sandia National Laboratories jouent un rôle important dans le domaine de la biodéfense. Pour finir, les laboratoires sur puce ne sont pas limités à l'analyse biologique ; ils peuvent également servir de réacteurs chimiques. Les dimensions réduites des systèmes microfluidiques permettent en effet un meilleur contrôle et une meilleure détection des réactions chimiques, notamment du mélange de réactifs[3],[28].

Protéomique[modifier | modifier le code]

La recherche protéomique est un domaine de recherche post-génomique très actif ; de nombreux travaux menés en microfluidique et sur les laboratoires sur puce sont liés à l'analyse des protéines et de leurs fonctions[16],[29],[30],[31]. La miniaturisation de l'analyse protéomique est motivée par le gain de performance du « triangle analytique »[32]. Freire et al. identifient quatre fonctions majeures indispensables à la protéomique sur puce : le traitement chimique, la préconcentration et le nettoyage, les séparations chimiques et les interfaces avec la spectrométrie de masse (pour analyse)[33]. Ils rappellent l'importance (et la difficulté) de développer les différents modules et de les intégrer sur un même support. Les opérations typiques réalisées sur puce sont la séparation rapide et l'analyse de digests de protéines[34] ; des résultats très encourageants sont obtenus, notamment par Li et al. : cette équipe a développé une réelle plate-forme protéomique d'analyse SPE-CE-MS[Note 1] de digests de protéines ; la plate-forme, équipée d'une dispense d'échantillons automatisée, est capable de traiter douze échantillons par heure[35].

Voir aussi[modifier | modifier le code]

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Notes[modifier | modifier le code]

  1. Solid-phase extraction, capillary electrophoresis and mass spectrometry : extraction en phase solide, séparation en électrophorèse capillaire et analyse par spectrométrie de masse.

Références[modifier | modifier le code]

  1. (en) S.C. Terry, J.H. Jerman & J.B. Angell, « A gas chromatographic air analyzer fabricated on a silicon wafer », IEEE Transactions on Electron Devices (en), vol. 26, no 12,‎ , p. 1880–1886 (« http://ieeexplore.ieee.org/search/wrapper.jsp?arnumber=1480369 »(Archive.orgWikiwixArchive.isGoogleQue faire ?))
  2. (en) A. Manz, N. Graber & H.M. Widmer, « Miniaturized total chemical analysis systems: A novel concept for chemical sensing », Sens. Actuator B-Chem., vol. 1, nos 1–6,‎ , p. 244–248 (DOI 10.1016/0925-4005(90)80209-I)
  3. a et b (en) A.J. DeMello, « Control and detection of chemical reactions in microfluidic systems », Nature, vol. 442, no 7101,‎ , p. 394–402 (DOI 10.1038/nature05062)
  4. (en) A. Manz, D.J. Harrison, E.M.J. Verpoorte, J.C. Fettinger, A. Paulus, H. Lüdi & H.M. Widmer, « Planar chips technology for miniaturization and integration of separation techniques into monitoring systems – capillary electrophoresis on a chip », J. Chromatogr. A, vol. 593, nos 1-2,‎ , p. 253–258 (DOI 10.1016/0021-9673(92)80293-4)
  5. (en) D.J. Harrison, A. Manz, Z. Fan, H. Lüdi & H.M. Widmer, « Capillary electrophoresis and sample injection systems integrated on a planar glass chip », Anal. Chem., vol. 64, no 17,‎ , p. 1926–1932 (DOI 10.1021/ac00041a030)
  6. (en) D.J. Harrison, K. Fluri, K. Seiler, Z. Fan, C.S. Effenhauser & A. Manz, « Micromachining a miniaturized capillary electrophoresis-based chemical analysis system on a chip », Science, vol. 261, no 5123,‎ , p. 895–897 (DOI 10.1126/science.261.5123.895)
  7. (en) M. U. Kopp, H. J. Crabtree & A. Manz, « Developments in technology and applications of microsystems », Current Opinion in Chemical Biology (en), vol. 1, no 3,‎ , p. 410–419 (DOI 10.1016/S1367-5931(97)80081-6)
  8. (en) A. van den Berg (en) & P. Bergveld, « Labs-on-a-chip: origin, highlights and future perspectives. on the occasion of the 10th µTAS conference », Lab on a Chip, vol. 6, no 10,‎ , p. 1266–1273 (DOI 10.1039/b612120a)
  9. (en) D.R. Reyes, D. Iossifidis, P.-A. Auroux & A. Manz, « Micro total analysis systems. 1. Introduction, theory, and technology », Anal. Chem., vol. 74, no 12,‎ , p. 2623–2636 (DOI 10.1021/ac0202435)
  10. (en) P.S. Dittrich, K. Tachikawa & A. Manz, « Micro total analysis systems. latest advancements and trends », Anal. Chem., vol. 78, no 12,‎ , p. 3887–3908 (DOI 10.1021/ac0605602)
  11. (en) J. West, M. Becker, S. Tombrink & A. Manz, « Micro total analysis systems: Latest achievements », Anal. Chem., vol. 80, no 12,‎ , p. 4403–4419 (DOI 10.1021/ac800680j)
  12. (en) P.-A. Auroux, D. Iossifidis, D.R. Reyes & A. Manz, « Micro total analysis systems. 2. Analytical standard operations and applications », Anal. Chem., vol. 74, no 12,‎ , p. 2637–2652 (DOI 10.1021/ac020239t)
  13. (en) Y. Sun & Y.C. Kwok, « Polymeric microfluidic system for DNA analysis », Anal. Chim. Acta, vol. 556, no 1,‎ , p. 80–96 (DOI 10.1016/j.aca.2005.09.035)
  14. (en) J.O. Tegenfeldt, C. Prinz, H. Cao, R.L. Huang, R.H. Austin, S.Y. Chou, E.C. Cox & J.C. Sturm, « Micro- and nanofluidics for DNA analysis », Anal. Bioanal. Chem., vol. 378, no 7,‎ , p. 1678–1692 (DOI 10.1007/s00216-004-2526-0)
  15. (en) D. Figeys & D. Pinto, « Proteomics on a chip: Promising developments », Electrophoresis, vol. 22, no 2,‎ , p. 208–216 (DOI 10.1002/1522-2683(200101)22:2<208::AID-ELPS208>3.0.CO;2-O)
  16. a et b (en) N. Lion, T.C. Rohner, L. Dayon, I.L. Arnaud, E. Damoc, N. Youhnovski, Z.-Y. Wu, Ch. Roussel, J. Josserand, H. Jensen, J.S. Rossier, M. Przybylski & H.H. Girault, « Microfluidic systems in proteomics », Electrophoresis, vol. 24, no 21,‎ , p. 3533–3562 (DOI 10.1002/elps.200305629)
  17. (en) J. El-Ali, P.K. Sorger & K.F. Jensen, « Cells on chips », Nature, vol. 442, no 7101,‎ , p. 403–411 (DOI 10.1038/nature05063)
  18. (en) Y. Tanaka, K. Sato, T. Shimizu, M. Yamato, T. Okano & T. Kitamori, « Biological cells on microchips: new technologies and applications », Biosens. Bioelectron., vol. 23, no 4,‎ , p. 449–458 (DOI 10.1016/j.bios.2007.08.006)
  19. (en) A. Hatch, A. E. Kamholz, K. R. Hawkins, M. S. Munson, E. A. Schilling, B. H. Weigl & P. Yager, « A rapid diffusion immunoassay in a T-sensor », Nat. Biotechnol., vol. 19, no 5,‎ , p. 461–465 (DOI 10.1038/88135)
  20. (en) C. T. Lim & Y. Zhang, « Bead-based microfluidic immunoassays: the next generation », Biosens. Bioelectron., vol. 22, no 7,‎ , p. 1197–1204 (DOI 10.1016/j.bios.2006.06.005)
  21. (en) S. Suzuki & S. Honda, « Miniaturization in carbohydrate analysis », Electrophoresis, vol. 24, no 21,‎ , p. 3577–3582 (DOI 10.1002/elps.200305662)
  22. (en) A.D. Zamfir, L. Bindila, N. Lion, M. Allen, H.H. Girault & J. Peter-Katalinić, « Chip electrospray mass spectrometry for carbohydrate analysis », Electrophoresis, vol. 26, no 19,‎ , p. 3650–3673 (DOI 10.1002/elps.200500101)
  23. (en) B. Charlton, B. Crossley & S. Hietala, « Conventional and future diagnostics for avian influenza », Comparative Immunology, Microbiology & Infectious Diseases,‎ (DOI 10.1016/j.cimid.2008.01.009)
  24. (en) B.L. Ziober, M.G. Mauk, E.M. Falls, Z. Chen, A.F. Ziober & H.H. Bau, « Lab-on-a-chip for oral cancer screening and diagnosis », Head & Neck (de), vol. 30, no 1,‎ , p. 111–121 (DOI 10.1002/hed.20680)
  25. (en) B.H. Weigl, R.L. Bardell & C.R. Cabrera, « Lab-on-a-chip for drug development », Adv. Drug Deliv. Rev., vol. 55, no 3,‎ , p. 349–377 (DOI 10.1016/S0169-409X(02)00223-5)
  26. (en) J.G.E. Gardeniers & A. van den Berg, « Lab-on-a-chip systems for biomedical and environmental monitoring », Anal. Bioanal. Chem., vol. 378, no 7,‎ , p. 1700–1703 (DOI 10.1007/s00216-003-2435-7)
  27. (en) H.Y. Tan, W.K. Loke, Y.T. Tan & N.-T. Nguyen, « A lab-on-a-chip for detection of nerve agent sarin in blood », Lab on a Chip, vol. 8, no 6,‎ , p. 885–891 (DOI 10.1039/b800438b)
  28. (en) S.J. Haswell, « Chemical technology: all together now », Nature, vol. 441, no 7094,‎ , p. 705 (DOI 10.1038/441705a)
  29. (en) J. Astorga-Wells, H. Jörnvall & T. Bergman, « A microfluidic electrocapture device in sample preparation for protein analysis by MALDI mass spectrometry », Anal. Chem., vol. 75, no 19,‎ , p. 5213–5219 (DOI 10.1021/ac0300901)
  30. (en) J. Astorga-Wells, S. Vollmer, S. Tryggvason, T. Bergman & H. Jörnvall, « Microfluidic electrocapture for separation of peptides », Anal. Chem., vol. 77, no 22,‎ , p. 7131–7136 (DOI 10.1021/ac050931z)
  31. (en) A. Dodge, E. Brunet, S. Chen, J. Goulpeau, V. Labas, J. Vinh & P. Tabeling, « PDMS-based microfluidics for proteomic analysis », Analyst, vol. 131, no 10,‎ , p. 1122–1128 (DOI 10.1039/b606394b)
  32. (en) N. Lion, F. Reymond, H.H. Girault & J.S. Rossier, « Why the move to microfluidics for protein analysis? », Current Opinion in Biotechnology, vol. 15, no 1,‎ , p. 31–37 (DOI 10.1016/j.copbio.2004.01.001)
  33. (en) S.L.S. Freire & A.R. Wheeler, « Proteome-on-a-chip: mirage, or on the horizon? », Lab on a Chip, vol. 6, no 11,‎ , p. 1415–1423 (DOI 10.1039/b609871a)
  34. (en) J.D. Ramsey, S.C. Jacobson, C.T. Culbertson & J.M. Ramsey, « High-efficiency, two-dimensional separations of protein digests on microfluidic devices », Anal. Chem., vol. 75, no 15,‎ , p. 3758–3764 (DOI 10.1021/ac0264574)
  35. (en) J. Li, T. LeRiche, T.-L. Tremblay, C. Wang, E. Bonneil, D.J. Harrison & P. Thibault, « Application of microfluidic devices to proteomics research: Identification of trace-level protein digests and affinity capture of target peptides », Molecular & Cellular Proteomics, vol. 1, no 2,‎ , p. 157–168 (DOI 10.1074/mcp.M100022-MCP200)