Fluoxétine

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Fluoxétine
Structure de l'énantiomère R de la fluoxétine (en haut) et de la S-fluoxétine (au milieu)
Structure de l'énantiomère R de la fluoxétine (en haut) et de la S-fluoxétine (au milieu)
Structure de l'énantiomère R de la fluoxétine (en haut) et de la S-fluoxétine (au milieu)
Identification
Nom IUPAC (RS)-N-méthyl-3-phényl-3-[4-(trifluorométhyl)phénoxy]-propan-1-amine
No CAS 54910-89-3 (racémique)
100568-02-3 [S(–)]
100568-03-4 [R(+)]
Code ATC N06AB03
PubChem 3386
SMILES
InChI
Propriétés chimiques
Formule brute C17H18F3NO  [Isomères]
Masse molaire[1] 309,3261 ± 0,0154 g/mol
C 66,01 %, H 5,87 %, F 18,43 %, N 4,53 %, O 5,17 %,
pKa 10,5
Propriétés physiques
Solubilité 14 g·l-1
Données pharmacocinétiques
Biodisponibilité 72 % (orale)
Métabolisme Hépatique (< 30 %)
Demi-vie d’élim. 1 - 3 j (prise unique)
4 - 6 j (au long cours)
Excrétion

Urinaire (80 %)
Fécale (15 %)

Considérations thérapeutiques
Classe thérapeutique Antidépresseur ISRS
Voie d’administration Orale
Unités du SI et CNTP, sauf indication contraire.
(chlorhydrate de) fluoxétine
Noms commerciaux
  • Fluoxetine Actavis (France),
  • Docfluoxetine (Belgique),
  • Fluctine (Suisse),
  • Fluesco (Suisse),
  • Fluocim (Suisse),
  • Fluox (Belgique),
  • fluox-basan (Suisse),
  • Fluoxemed (Belgique),
  • Fluoxetine Arrow (France),
  • Fluoxetine BIOGARAN (France),
  • Fluoxetine BOUCHARA RECORDATI (France),
  • Fluoxetine EG (Belgique, France),
  • Fluoxetine G GAM (France),
  • Fluoxetine GNR (France),
  • Fluoxétine Helvepharm (Suisse),
  • Fluoxetine IREX (France),
  • Fluoxetine IVAX (France),
  • Fluoxétine-Mepha (Suisse),
  • Fluoxetine MERCK (France),
  • Fluoxetine QUALIMED (France),
  • Fluoxetine RATIOPHARM (Canada, France),
  • Fluoxetine RPG (France),
  • Fluoxétine Sandoz (Belgique, Canada, Suisse),
  • Fluoxetine Teva (Belgique, Canada, France),
  • Fluoxetine ZYDUS (France),
  • Fluoxetop (Belgique),
  • Fluoxifar (Suisse),
  • Fluoxone (Belgique),
  • Flusol (Suisse),
  • Fontex (Belgique),
  • Merck-fluoxetine (Belgique),
  • Prosimed (Belgique),
  • Prozac (Belgique, Canada, France),
Classe antidépresseur
Autres informations Sous classe : 3e groupe (ISRS)

Le chlorhydrate de fluoxétine est un psychotrope de type inhibiteur sélectif de la recapture de la sérotonine (ISRS) utilisé comme antidépresseur dans le traitement de la dépression, des troubles obsessionnels compulsifs, de la boulimie nerveuse, des troubles dysphoriques prémenstruels, et de nombreux autres états.

La fluoxétine fut découverte par Eli Lilly en 1974[2] qui la commercialisa sous le nom Prozac en 1986[3]. Depuis l'automne 2001, le chlorhydrate de fluoxétine n'est plus protégé par son brevet et est produit par de nombreux autres laboratoires. Il a été prescrit à plus de 34 millions de personnes dans le monde de 2001 à 2009[4].

Description[modifier | modifier le code]

Gélules de fluoxétine

La fluoxétine est un dérivé de la diphénhydramine, un antihistaminique avéré pour empêcher la recapture de la sérotonine.

La fluoxétine interagit avec certaines substances dont les inhibiteurs de monoamine oxydase (IMAO).

Elle est principalement utilisée dans les dépressions marquées par un manque d'énergie du fait de son effet stimulant, mais aussi dans d'autres conditions comme l'anxiété ou la panique.

Son élimination est lente, sa demi-vie est de quatre jours. Le foie métabolise la fluoxétine en norfluoxétine, qui est également un inhibiteur sélectif de la recapture de la sérotonine et dont la demi-vie est encore plus longue, de 8,6 à 9,3 jours. Certains professionnels considèrent que la durée de sa demi-vie est liée à son efficacité thérapeutique mais aucune étude fiable n'a été faite sur ce point.

La prise d'alcool sous fluoxétine est formellement déconseillée par les prescripteurs et ceci est précisé sur la notice. L'effet synergique des 2 substances peut induire des troubles du comportement graves notamment un risque de passage à l'acte suicidaire.

Dans le cas où il existe des dysfonctions sexuelles (désir sexuel hypoactif, anorgasmie, trouble de l'excitation...) antérieures à l'apparition d'un état dépressif, une utilisation de la fluoxétine devra impérativement être évitée[5].

En médecine vétérinaire, elle peut être prescrite pour traiter les troubles du comportement liés à l'anxiété.

Législation[modifier | modifier le code]

La fluoxétine est en annexe 1 des drogues au Canada, où elle n'est donc délivrée que sur prescription. Cette molécule est aussi délivrée sous prescription en France, en Belgique, en Suisse, et en Espagne.

Efficacité[modifier | modifier le code]

L'efficacité du traitement est variable selon les sujets et la justesse du diagnostic psychiatrique établi au préalable. Les résultats obtenus auprès des différentes études réalisées récemment au niveau international sont variables et nécessitent des recherches ultérieures[6]. De plus, il existe un effet dose-dépendant.

Effets secondaires[modifier | modifier le code]

Modèle:Sudations, tremblements, anorexie, trouble digestifs, asthénie, vertiges

Controverse[modifier | modifier le code]

Vers la fin des années 1990, une polémique s'est développée, la firme Eli Lilly avait notamment fait d'énormes bénéfices avec le succès du Prozac.

Il lui est notamment reproché d'augmenter les risques de passage à l'acte suicidaire (risque présent chez tous les anti-dépresseurs puisqu'ils restaurent rapidement une certaine forme d'énergie avant de soigner la tristesse pathologique) surtout quand il est utilisé sur des enfants ou des adolescents[7].

En décembre 2004, le British Medical Journal (BMJ) publia des documents officiels d'Eli Lilly datant des années 1980 et suggérant un lien entre la fluoxétine, le suicide et la psychose. Le magazine affirmait également que la firme avait dissimulé ces informations, point sur lequel le BMJ a dû se rétracter[8].

Biodégradabilité[modifier | modifier le code]

Aucune étude sur la dégradabilité de la fluoxétine n'a été faite mais il est possible de penser qu’elle se biodégrade comme les autres pharmaceutiques. Une fois dans les eaux de surface, la biotransformation des pharmaceutiques par la biodégradation a lieu, mais les réactions de transformations abiotiques sont probablement plus importantes et la photodégradation[9] est un des processus les plus importants à prendre en compte[10].

Devenir environnemental[modifier | modifier le code]

La fluoxétine qui est consommée par les êtres humains est métabolisée en norfluoxétine par les isoenzymes cytochrome P450. La voie principale d’excrétion de la fluoxétine et de la norfluoxétine étant l’urine et jusqu’à 11 % du médicament est excrété en tant que fluoxétine non métabolisée[11].

Dans les eaux de surface[modifier | modifier le code]

Quelques études ont été faites pour déterminer la concentration de fluoxétine dans les eaux de surface de plusieurs pays. La concentration de fluoxétine est de 21,4 ± 31,2 ng·l-1 dans la rivière Henares-Jarama-Tajo en Espagne[12]. Une concentration de 12 ng/L de fluoxétine a été mesurée dans l’eau de surface aux États-Unis[13]. À titre comparatif, en Norvège, une concentration de 0 à 3 ng/L a été mesurée dans les effluents des hôpitaux. Cela peut confirmer que les hôpitaux ne sont pas les sources majeures de fluoxétine dans les eaux de surface[14]. Finalement une concentration de 99 ng/L a été mesurée dans les effluents des usines de traitements des eaux au Canada[15].

Méthodes d'analyse[modifier | modifier le code]

Il faut d’abord faire l’échantillonnage d’une façon adéquate puisqu’il ne faut pas détériorer l’échantillon. Ensuite une pré-concentration est faite par une extraction en phase solide (SPE). Les concentrations retrouvées dans l’eau de surface sont en quantité trace alors il est nécessaire de concentrer l’échantillon pour pouvoir détecter la fluoxétine avec un instrument analytique. Finalement l’analyse s’effectue par chromatographie liquide couplé par spectrométrie de masse en tandem (LC-MS/MS).

L’extraction de la fluoxétine est effectuée avec de l’eau de qualité HPLC et de l’eau environnementale. Des bouteilles ambrées préalablement rincées avec de l’eau ultra-pure sont utilisées pour la collection des échantillons. L’eau environnementale est filtrée au travers d’une membrane de nylon 0,45 μm. L’entreposage des échantillons se fait à −20 °C, ainsi l’activité biologique est réduite de façon considérable. Il y a 2 types de sorbants utilisés pour cette analyse : HLB et MIP. Le sorbant HLB est un copolymère macroporeux fait avec un ratio balancé de deux monomères, le divinylbenzène lipophylique et la N-vinylpyrrolidone hydrophobique. Le MIP est un polymère avec une empreinte moléculaire (Molecular Imprinted Polymer). Dans le cas présent, l’empreinte est faite pour l’analyse des drogues pharmaceutiques. Ce sont en fait des cartouches SPE fait avec de l’acide méthylacrylique provenant de MIPTechnologies (SupelMIP).

Sorbant HLB[modifier | modifier le code]

Pour le sorbant HLB, la méthode est la suivante; il faut prendre 100 ml d’échantillon aqueux qu’on va doper avec 0,5 μg·l-1 de fluoxétine pur. L’échantillon est passé au travers de la cartouche SPE au pH naturel du cours d’eau (qui est d’environ 8,3 pour une rivière) à un taux de 5 mL/minute. La cartouche est préalablement conditionnée avec 5 ml de méthanol et d’eau de qualité HPLC. Après avoir passé l’échantillon au travers de la cartouche, elle est rincée avec 5 ml d’eau de qualité HPLC. La cartouche est ensuite séchée sous vide pendant 15 minutes. L’élution se fait par la suite avec 2 × 4 ml de méthanol et les extraits sont évaporés avec un léger jet d’azote. 0,5 ml d’un mélange d’acétonitrile/eau (10: 90 v/v) avec 100 ng/mL d’étalon interne est ajouté à l’extrait évaporé. L’étalon interne est le fluoxétine-d5[4].

Sorbant MIP[modifier | modifier le code]

Pour ce qui est du sorbant MIP; 25-200 ml de l’échantillon aqueux à son pH naturel est passé au travers de la cartouche MIP à un taux d’environ 1 mL/minute. Les cartouches sont pré-conditionnées avec 1 mL de méthanol suivi de 1 mL d’eau de qualité HPLC. Une fois l’échantillon passé au travers de la cartouche, elle est rincée avec 2 × 1 mL d’eau de qualité HPLC et séchée sous vide pendant 10 minutes. Pour la prochaine étape de lavage, 1mL d’acétonitrile est passé dans la cartouche et elle est séchée sous vide pour 10 minutes. Le solvant d’élution est 4 × 1 mL de méthanol (10 % d’acide acétique). Finalement les extraits sont évaporés et reconstitués comme dans la méthode HLB[4].

Chromatographie liquide à ultra performance (UPLC)[modifier | modifier le code]

Une fois les échantillons préparés, ils sont analysés par UPLC-MS/MS avec une colonne C18. Les gradients utilisés pour l’analyse avec l’acétonitrile (A) et une solution d’acide formique 0,1 % sont :

  • 10 % de A pendant 0,5 minute ;
  • 30 % de A à 2,5 minutes ;
  • 80 % de A à 5 minutes ;
  • 100 % de A à 5,5 minutes ;
  • 10 % de A à 6,5 minutes.

C’est donc une analyse rapide puisque c’est un instrument UPLC qui est utilisé. Le débit est de 400 μL/minute et la colonne est maintenue à 30 °C. Avec le sorbant MIP et HLB, il est possible d’obtenir une limite de détection de la méthode (MDL) de 0,5 ng/L[4].

Spectrométrie de masse[modifier | modifier le code]

Pour ce qui est du spectromètre de masse en tandem, les composés sont ionisés par électronébuliseur en mode positive. Le voltage du capillaire est de 3,00 kV et les températures de la source et de la désolvatation sont de 120 et 350 °C respectivement. Les limites de détections instrumentales sont de moins de 1 pg. Des pourcentages de recouvrements de 75 ± 1 % pour MIP et 92 ± 12 % pour HLB sont obtenus. Un recouvrement plus précis est donc obtenu avec le sorbant MIP[4].

Écotoxicologie[modifier | modifier le code]

Le fait qu’il y ait de la fluoxétine dans l’environnement est préoccupant puisque les conséquences d’une exposition prolongée à des quantités traces sont inconnues. Bien que les médicaments actifs aient des durées de demi-vie courtes à cause de processus biotiques ou non-biotiques, leur infusion continue dans l’environnement cause des expositions multi-générationnelles aux organismes marins[16]. Il se pourrait qu’il y ait des changements biologiques continus pour ces organismes et que nous ne soyons pas en mesure de les apercevoir. Par conséquent, il pourrait survenir des impacts irréversibles qui pourrait être attribués à un changement naturel ou à une adaptation[17].

Les valeurs de EC50 après 24 heures d’incubation pour Tetrahymena thermophila (protozoaire) sont de 30,5 (±0,7) mg L-1 et de 3,2 (±0,1) mg L-1 pour (–)-(R)-fluoxétine et (+)-(S)-fluoxétine respectivement alors l’isomère (+)-(S)-fluoxétine est beaucoup plus toxique pour cette espèce[18]. Pour Daphnia Magna (crustacé zooplanctonique), les deux énantiomères sont pratiquement aussi toxiques. Pour le taux de pâturage de ce crustacé zooplanctonique, la concentration minimale où il y a eu un effet observable est de 195 μg·l-1 pour l’isomère (S) pour une durée de 21 jours. La concentration où il y a eu un effet observable sur la croissance de Pimephales promelas (poisson) est de 53 μg·l-1 pour un mélange racémique de fluoxétine pour une période de 7 jours[19]. De plus, ce médicament a des propriétés anti-microbiotiques et pourrait inhiber des pompes cellulaires[20]. Les conséquences potentielles de ce pharmaceutique sur la santé des humains sont inconnues. Il est important de noter que malgré une certaine utilité des bioessais, ils ne sont pas représentatifs de ce qui se passe réellement dans les eaux de surface. Ils sont très souvent limités à quelques jours ou quelques semaines alors qu’en vérité, les organismes passent une vie complète avec ces contaminants.


Divers[modifier | modifier le code]

La fluoxétine fait partie de la liste des médicaments essentiels de l'Organisation mondiale de la santé (liste mise à jour en avril 2013)[21].

Usage vétérinaire[modifier | modifier le code]

La fluoxetine aide à la thérapie comportementale chez le chien, en particulier dans le traitement du trouble de l’anxiété de séparation se manifestant par des comportements inappropriés. En Belgique la spécialité s'appelle Reconcile[22]

Notes et références[modifier | modifier le code]

  1. Masse molaire calculée d’après « Atomic weights of the elements 2007 », sur www.chem.qmul.ac.uk.
  2. David T. Wong, Jong S. Horng, Frank P. Bymaster, Kenneth L. Hauser et Bryan B. Molloy, « A selective inhibitor of serotonin uptake: Lilly 110140, 3-(p-Trifluoromethylphenoxy)-n-methyl-3-phenylpropylamine », Life Sciences, vol. 15, no 3,‎ 1974, p. 471–9 (PMID 4549929, DOI 10.1016/0024-3205(74)90345-2)
  3. Jeff Swiatek, « Prozac's profitable run coming to an end for Lilly », The Indianapolis Star,‎ août 2, 2001 (lire en ligne)
  4. a, b, c, d et e (en) Demeestere, K., Petrović, M., Gros, M., Dewulf, J. « Trace analysis of antidepressants in environmental waters by molecularly imprinted polymer-based solid-phase extraction followed by ultra-performance liquid chromatography coupled to triple quadrupole mass spectrometry » Anal Bioanal Chem. 2010;396:825-837
  5. Sutherland JE, Sutherland SJ, Hoehns JD, « Achieving the best outcome in treatment of depression », Journal of Family Practice, vol. 52, no 3,‎ mars 2003, p. 201–09 (PMID 12620174, lire en ligne)
  6. (en) Glartlehner G. et al. « Comparative benefits and harms of second-generation antidepressants: background paper for the American College of Physicians » Ann Intern Med. 2008, 18; 149(10): 734-50.
  7. [PDF]« Le bon usage des antidépresseurs chez l’enfant et l’adolescent » (ArchiveWikiwixArchive.isGoogleQue faire ?). Consulté le 2013-08-15 Guide de l'agence française de sécurité sanitaire des produits de santé
  8. « Le Prozac n'a pas déprimé les salariés de Lilly France » Stratégies, 10 février 2005
  9. Dégradation de certaines matières sous l'action des rayons ultraviolets
  10. (en) Fent K, Weston AA, Daniel Caminada « Ecotoxicology of human pharmaceuticals » Aquatic Toxicology, 2006;76:122–159
  11. (en) Morando, MB, Medeiros LR, McDonald MD. « Fluoxetine treatment affects nitrogen waste excretion and osmoregulation in a marine teleost fish » Aquatic Toxicology 2009;93:253
  12. (en) Fernández C, González-Doncel M, Carbonell JPG. « Occurrence of pharmaceutically active compounds in surface waters of the henares-jarama-tajo river system (Madrid, Spain) and a potential risk characterization » Science of the Total Environment 2010;408:543–551
  13. Kolpin, D.W.; Furlong, E.T.; Meyer, M.T.; Thurman, E.M.; Zaugg, S.D.; Barber, L.B.; Buxton, H.T., Pharmaceuticals, hormones, and other organic wastewater contaminants in US streams, 1999–2000: a national reconnaissance, Environ. Sci. Technol., 2002, 36, 1202–1211
  14. Langford, K. H.; Thomas, K. V., Determination of pharmaceutical compounds in hospital effluents and their contribution to wastewater treatment works, Environment International, 2009, 35, 769
  15. Metcalfe, C.D.; Miao, X.S.; Koenig, B.G.; Struger, J., Distribution of acidic and neutral drugs in surface waters near sewage treatment plants in the lower Great Lakes, Canada, Environ. Toxicol. Chem., 2003, 22, 2881–2889
  16. Andre, F. D.: Castan, G.; Ri’Os. N. Use of Toxicity Assays for Enantiomeric Discrimination of Pharmaceutical Substances, Chirality, 2009, 21, 751-758
  17. Daughton, C.G.; Ternes, T.A. Pharmaceuticals and personal care products in the environment: agents of subtle change? Environ Health Perspect, 1999,107, 907–938
  18. Andre, F. D.: Castan, G.; Ri’Os. N. Use of Toxicity Assays for Enantiomeric Discrimination of Pharmaceutical Substances, Chirality, 2009, 21, 751-758
  19. Stanley, J. K.; Ramirez, A. J.; Chambliss, K.; Brooks, B. W., Enantiospecific sublethal effects of the antidepressant fluoxetine to a model aquatic vertebrate and invertebrate, Chemosphere, 2007, 69 page 9–16
  20. Bellido, M.;, Criado, M., Rodrıguez, G., Antimicrobial activity of psychotropic drugs: selective serotonin reuptake inhibitors, Int J Antimicrob Agents, 2000, 14, 177–180
  21. WHO Model List of Essential Medicines, 18th list, avril 2013
  22. Antidépresseurs, sur le site cbip-vet.be - consulté le 11 novembre 2012

Voir aussi[modifier | modifier le code]

Articles connexes[modifier | modifier le code]

Liens externes[modifier | modifier le code]